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成功开发3D细胞培养测定的7个技巧

传统的细胞研究是将细胞放置在二维表面上。虽然这些研究在推进生物医学研究方面有极大的帮助,但现在人们普遍认为,二维细胞不能忠实地代表生物体中细胞生理学的许多关键特征。毫不奇怪,这主要是因为活组织中的细胞在三维空间中进化!

在3D中,细胞被迫通过其整个表面区域与微环境(与其他细胞或细胞外基质(ECM))进行更强烈的相互作用。相比之下,在2D中培养的细胞通常有一半的表面积暴露在玻璃或塑料中,另一半暴露在介质中。

在3D中重现更复杂的微环境相互作用是至关重要的,因为我们现在知道体内细胞受到周围环境的严重影响,特别是受ECM的影响。1值得注意的是,我们现在知道微环境可以影响细胞对药物的反应。2、3这凸显了模拟微环境对体外药物测试的重要性。

因此,开发3D细胞模型的转变有助于创建更多与生理相关的体外模型。这有两个主要目的:更有效地在体外测试药物4或者在植入病人体内之前对细胞进行更好的预处理。5

虽然向3D细胞培养的转变在过去十年中一直在进行,但它仍在迅速发展,以满足不断增长和动态的制药需求。到目前为止,3D细胞培养依赖于无数种格式(通常是组合的),依赖于水凝胶、生物反应器、工程支架或微流体平台的使用。6在这里,我们提供了一些提示,我们认为对任何进行3D细胞培养的人都是必要的。

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尽早弄清楚如何让你的细胞荧光


虽然在2D中,光场成像通常足以使细胞可视化,但在3D中,由于细胞在多个平面上进化,问题变得更难解决。让你的细胞荧光可以极大地促进它们的3D可视化。获得荧光细胞并非易事。如果你的实验室有专业技术,你可以购买荧光细胞株或自己转染它们。在任何一种情况下,这些细胞将具有稳定表达荧光报告,从而永久发射荧光的优势。

如果你处理的是原代细胞,它们要么敏感,要么需要新鲜分离,每次重复转染可能不太理想。在这种情况下,可以考虑使用可以被细胞吸收的染料,使它们暂时具有荧光(例如Invitrogen公司的CellTracker)。然而,这种方法只能在很短的时间内产生荧光,并且可能对细胞有毒。如果你要转染你的细胞,用荧光对它们进行分类是个好主意,这样你就能分离出高度荧光的同质细胞群。否则,细胞之间荧光的异质性将使你很难调整成像设置来检测它们。

与此同时,仔细考虑你想要分析什么:有几种方法可以对细胞的特定区域进行染色,例如,只对细胞核、膜或整个细胞质进行染色。如果您试图分析精细的突起或膜动态,对整个细胞质进行染色可能不理想。在任何情况下,请记住,使细胞荧光会影响它们的生理机能,因此将它们与相同的非荧光细胞进行比较总是明智的。

根据成像需求选择合适的平台


有许多平台适合3D细胞培养,从传统的孔板,到生物反应器或微流体平台。为你的实验选择合适平台的一个重要标准是你的成像需求:如果你需要成像,特别是在高分辨率下,你要确保你所使用的平台提供适当的成像深度。换句话说,单元格需要足够接近目标,以实现所需的分辨率。这也适用于2D细胞培养实验,但3D细胞培养为您的实验增加了额外的深度。因此,你需要确保3D结构中的单元格现在离目标不会太远。

为你的支架选择合适的配体


在体内,细胞与构成ECM的蛋白质(称为整合素)上的粘附位点相互作用,这极大地影响了细胞的行为。1不同的器官由不同的ECM蛋白组合组成,每个ECM蛋白由独特的整合素组组成。要决定在您的实验中使用哪种ECM(如胶原蛋白、纤维蛋白、层粘胶蛋白或基质蛋白),一个好的起点在于确定您试图模拟的器官:例如,并非所有器官都特别富含I型胶原蛋白,如大脑。请注意,你也可以通过添加配体位点来实现聚合物的功能化,7或者人们可以通过混合天然和合成聚合物来创造一种混合水凝胶。天然聚合物提供生物功能,而合成聚合物提供可调的机械性能。8

控制支架的刚度和孔隙大小


您需要考虑细胞嵌入的基质的浓度和交联,因为这将影响它们的硬度和孔径。已知硬度和孔径会影响细胞迁移、生理和对药物的反应。不同器官的情况也不同;因此,人们应该根据他们试图重建的组织来调整这些变量。一个重要的问题是,刚度和孔径变量不是相互独立的。通常,为了增加刚性,人们会增加聚合物的浓度;然而,这很可能会减少水凝胶的孔隙大小。因此,很难单独分离这些变量的影响,尽管少数小组已经成功地做到了这一点。9、10

想想脚手架表面的涂层


细胞对所有表面的喜爱不尽相同。虽然这对于2D细胞培养尤其重要,其中大多数细胞与表面直接接触,但它也与3D细胞分析相关。3D细胞分析可以包含细胞单层,这是更大和更复杂的组织样模型的一部分。例如,细胞被种植在聚二甲基硅氧烷(PDMS)膜上,以模拟肺-空气界面。11或者细胞被植入PDMS微流体通道,以重建覆盖3D水凝胶的圆柱形内皮单分子层。12在这些情况下,需要在这些表面预涂ECM,如纤维连接蛋白,以促进细胞附着。另外,表面涂层也可以确保水凝胶附着13到你的平台上去。

别忘了扩散现在很重要!


在二维单层中,你所有的细胞都暴露在介质中:它们都被平等地直接滋养和充氧。在3D中,事情会发生变化。嵌入3D支架的细胞必须依赖于介质通过支架的扩散。扩散与距离成反比。这意味着3D结构中不同深度的细胞可以暴露在不同(且不足的)营养或氧气水平下,从而建立稳定或短暂的梯度。例如,这在大型肿瘤球体中是一个众所周知的现象,由于氧气、营养物质以及二氧化碳和废物清除能力的减少,坏死核心形成。14这种类型的梯度在体内的选定过程中被发现,因此在体外繁殖可能是有趣的。然而,人们必须意识到在3D细胞培养中建立这些梯度,因为如果它们导致支架中的一些细胞营养不足,它们可能并不总是需要的。在体内,组织的血管化使靠近血管的细胞保持营养和活力。因此,除非你决定给你的3D细胞检测血管化或设计其他策略来克服缺氧,15确保你控制了构建的深度,并承认这些梯度的可能性,因为它们会影响细胞的生理机能。

保持冷静,保持简单


最重要的是,试着让你的实验尽可能简单。在目前实现最生理学相关模型的竞赛中,人们很容易被诱惑添加许多细胞类型或其他变量,即使它不能直接解决你的生物学问题。确保你尽可能用最简单的分析方法回答尽可能多的初步问题,然后再进行更复杂的实验。

参考文献
  1. 金,工程学系。滕布尔,J. & Guimond, S.细胞外基质与细胞信号:整合素,蛋白多糖和生长因子受体的动态合作。中华内分泌杂志,209,139 - 151(2011)。
  2. 中曾根,E. S.等。化疗期间肿瘤间质相互作用的成像揭示了微环境对耐药性的贡献。中华癌症杂志(2012)。
  3. Shin J.-W。细胞外基质硬度引起髓系白血病增殖和化学敏感性的系统性变化。Proc。国家的。中国农业科学,2016,31(4):344 - 344。
  4. 方勇和埃格伦。M.三维细胞培养在药物发现和开发中的应用。sla。生命科学研究进展22,456-472(2017)。
  5. Wendt, D., Riboldi, s.a., Cioffi, M. & Martin, I.生物反应器在3D细胞培养和组织制造中的潜力和瓶颈。清华大学学报(自然科学版)
  6. 3D细胞培养:市场和工业需求,一个Elveflow教程。(2018)。
  7. 毛里,E.等人。RGD功能化在混合水凝胶中作为三维神经干细胞培养系统的评估。Biomater。科学。(2018)。doi: 10.1039 / C7BM01056G
  8. 朱军。& Marchant, r.e。水凝胶组织工程支架的设计性能。Expert Rev. Med. Devices 8,607 - 626(2011)。
  9. Huebsch, N.等人。利用牵引介导的细胞/基质界面操纵来控制干细胞命运。《物理学报》,9,518-526(2010)。
  10. Mason, B. N, Starchenko, A., Williams, R. M., Bonassar, L. J. & Reinhart-King, C. A.调节三维胶原蛋白基质刚度独立于胶原蛋白浓度调节内皮细胞行为。生物学报,9,4635-4644(2013)。
  11. 嗯,d等人。在芯片上重构器官级别的肺功能。科学学报(自然科学版)
  12. Zervantonakis, i.k.等。肿瘤细胞灌注与内皮屏障功能的三维微流体模型。Proc。国家的。中国生物工程学报(自然科学版)
  13. Shin, Y.等人。用于在表面或水凝胶内同时培养多种细胞类型的微流控检测。Nat protocol . 7, 1247-59(2012)。
  14. 林,R.-Z。,林,r.z。&张,h - y。生物医学研究中三维多细胞球体培养的最新进展。Biotechnol。J. 3, 1172-84(2008)。
  15. Malda, J., Klein, T. J. & Upton, Z.缺氧在组织体外工程中的作用。组织工程13,2153-62(2007)。


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